提質粒步驟如下：
壹、步驟
1、接1%含質粒的大腸桿菌細胞於2mlLB培養基。
2、37℃振蕩培養過夜。
3、取1.5ml菌體於Ep管(離心管)，以4000rpm離心3min，棄上清液。
4、加0.lml溶液I（1%葡萄糖，50mM/LEDTApH8.0，25mM/LTris-HClpH8.0）充分混合。
5、加入0.2ml溶液II（0.2mM/LNaOH，1%SDS），輕輕翻轉混勻，置於冰浴5min.
6、加入0.15ml預冷溶液III（5mol/LKAc，pH4.8），輕輕翻轉混勻，置於冰浴5min.
7、以10，000rpm離心20min，取上清液於另壹新Ep管
8、加入等體積的異丙醇，混勻後靜置10min.
9、以10，000rpm離心20min，棄上清。
10、用70%乙醇0.5ml洗滌壹次，抽幹所有液體。
11、待沈澱幹燥後，溶於50ulTE緩沖液中（或60℃溫育去離子水）。
二、實驗原理
提取質粒DNA的方法有很多種，從提取產量上分可分為微量提取、中量提取、大量提取，從使用儀器上分可分為壹般提取和試劑盒方法提取，從具體操作方法分可以分為堿裂解法、煮沸法、牙簽法等，各種不同的方法各有其優缺點，根據不同的實驗目的可以采用合適的提取方法。參考《分子克隆實驗指南》。
三、提取竅門
1、加溶液II（裂解液）後，操作壹定要溫和，劇烈混合會導致基因組DNA汙染。
2、洗脫時60℃溫育（Ellution-Buffer）洗脫緩沖液或去離子水效果更好。
3、若質粒提取含量低，可增加菌液樣或換用ArtMedia-Plasmid-Culture，其比LB培養基質粒得量高。
4、菌體應徹底懸浮，如果沒有徹底懸浮菌體，則殘留的菌體團塊在溶液II加入後，變成難以完全裂解的團塊。這個團塊在溶液III加入後，會有壹部分蛋白質繼續存在於溶液中，成為蛋白質殘留的最大根源。
5、加入溶液II後，混勻，體系最好能立即變得清澈。體系如果變得清澈了，馬上加入溶液III中和。
6、中和的操作，在1.5ml離心管中加入溶液III後，先顛倒兩次，使管底朝上，用指頭彈擊管底數次，再顛倒混勻。效果非常好。